Kit de réactifs colorant BA4083A

pour histopathologiede laboratoirede diagnostic

La coloration EVG des fibres élastiques est utile pour démontrer l'hyperplasie, la fracture, la rupture ou la fragmentation du tissu élastique comme aide au diagnostic. Observer les fibres de collagène et les fibres musculaires en les contrant avec la solution VG. Principe : Le principe de cette méthode n'est pas bien connu. L'hypothèse est qu'une liaison hydrogène se forme entre certaines parties de la fibre élastique et le groupe phénolique de la résorcine dans la coloration de l'élastine, ce qui a pour effet de colorer la fibre élastique en bleu-noir. La coloration VG est une contre-coloration. Méthodes : 1. Déparaffiner et hydrater les sections à l'eau. 2. Oxyder dans du permanganate de potassium pendant 5 minutes. Rincer à l'eau distillée. 3. Blanchir dans de l'acide oxalique pendant 5 minutes. Rincer à l'eau distillée. 4. Rincer légèrement dans de l'éthanol à 95 % et colorer avec de la teinture d'élastine pendant 8 à 24 heures. 5. Différencier dans l'éthanol à 95 % ou l'acide chlorhydrique à 1 % (observer au microscope si nécessaire). 6. Rincer soigneusement à l'eau du robinet et à l'eau distillée. 7. Contre-coloration dans la solution VG pendant 1 minute. Différencier rapidement dans l'éthanol à 95 % pendant quelques secondes. Déshydrater dans l'éthanol absolu et éclaircir au xylène. Monter avec un milieu de montage. Précaution : 1. Différencier les tissus directement dans l'éthanol à 95 % après la coloration de l'élastine, sans les rincer à l'eau. 2. Comme la coloration à l'élastine est relativement volatile et prend beaucoup de temps pour terminer la coloration, tremper et colorer dans un récipient hermétique. 3. Après la coloration dans la solution VG, ne pas rincer à l'eau mais faire tomber directement de l'éthanol à 95 % pour différencier et déshydrater dans de l'éthanol absolu. Sinon, les couleurs colorées avec la solution VG s'affaibliront ou même se décoloreront.